實驗原理
瓊脂糖凝膠電泳常用於(yu) 分離、鑒定 DNA、RNA 分子混合物,以瓊脂凝膠作為(wei) 支持物,利用 DNA 分子在電場中時的電荷效應和分子篩效應,達到分離混合物的目的。DNA 分子在高於(yu) 其等電點的溶液中帶負電,在電場中由陰極向陽極運動。在一定的電場強度下,忽略DNA分子攜帶的電荷,DNA 分子的遷移速度取決(jue) 於(yu) 分子篩效應,即分子本身的大小和構型是主要的影響因素。DNA 分子的遷移速度與(yu) 相對分子量成反比。
不同構型的 DNA 分子的遷移速度不同。如環形 DNA 分子樣品,其中有三種構型的分子:超螺旋分子(cccDNA)、開環分子(ocDNA)、和線形 DNA 分子(IDNA)。這三種不同構型分子進行電泳時的遷移速度大小順序為(wei) :cccDNA>IDNA>ocDNA。
核酸電泳通常使用瓊脂糖凝膠和聚丙烯酰胺凝膠兩(liang) 種介質。瓊脂糖是一種聚合鏈線性分子;聚丙烯酰胺凝膠由丙烯酰胺(Acr)在 N,N,N′-四甲基乙二胺(TEMED)和過硫酸銨(AP)的催化下聚合形成長鏈,並通過交聯劑 N,N′-亞(ya) 甲雙丙烯酰胺(Bis)交叉連接而成。瓊脂糖凝膠適合分離200bp至近50kb的DNA片段,而聚丙烯酰胺凝膠對於(yu) 小片段(5bp-500bp)的分離效果很好,且分辯力*。選擇不同濃度的凝膠,可以分離丌同大小範圍的 DNA 分子。電場強度愈大,帶電顆粒的運動赹快。但凝膠的有效分離範圍隨著電壓增大而減小,所以電泳時一般采用低電壓,不超過 6V/cm。而對於(yu) 大片段電泳,可以選擇 0.5-1.0V/cm 電泳過夜。如果選擇高電壓電泳,可使用聚丙烯酰胺凝膠。
核酸電泳常采用 TAE、TBE、TPE 三種緩衝(chong) 係統。TAE 價(jia) 格低廉,但緩衝(chong) 能力低。TPE 在進行 DNA 回收時,會(hui) 使 DNA 汙染磷酸鹽,影響後續反應。所以綜合考慮,多采用 TBE 緩衝(chong) 液。
核酸電泳中常用的染色劑是溴化乙錠(EB)。溴化乙錠是一種扁平分子,可以嵌入核酸雙鏈的配對堿基之間。在紫外線照射 BE-DNA 複合物時,通過發光指示核酸的位置。由於(yu) EB有較強的揮發性和毒性,現在大多選擇EB替代品進行試驗,比較常用的有gelred,goldview,ybr-green等,但是整體(ti) 效果都若於(yu) 傳(chuan) 統的EB。
材料、試劑及器具
1、材料
合適的Marker(分子量標準);DNA 樣品
2、試劑
加樣緩衝(chong) 液(6x或10x);瓊脂糖;溴化乙錠(EB)。
3、器具
(1)電泳係統:電泳儀(yi) 、水平電泳槽、製膠板等。
(2)凝膠成像係統或紫外透射儀(yi) 。
實驗過程
1、按所分離的 DNA 分子的大小範圍,選擇合適的比例的凝膠,稱取適量的瓊脂粉,放到一錐形瓶中,加入適量的 TBE電泳緩衝(chong) 液。然後置微波爐加熱至瓊脂粉*溶化,溶液透明。稍搖勻,得膠液。待膠液卻至 60℃左右,在膠液內(nei) 加入適量的比例的溴化乙錠液。
2、水平放置膠槽,在一端插好梳子,在槽內(nei) 緩慢倒入已況至 60℃左右的膠液,使之形成均勻水平的膠麵。
3、待膠凝固後,小心拔起梳子,使加樣孔端置陰極段放進電泳槽內(nei) 。
4、在槽內(nei) 加入TBE電泳緩衝(chong) 液,至液麵覆蓋過膠麵。
5、把待檢樣品,按合適比例與(yu) 加樣緩衝(chong) 液混勻,用移液槍加至凝膠的加樣孔中。
6、接通電泳儀(yi) 和電泳槽,並接通電源,調節合適電壓,穩壓輸出,開始電泳。
7、觀察溴酚蘭(lan) 的帶(藍色)的位置。當其移動至約凝膠長2/3處時,可停止電泳。
8、在紫外透視儀(yi) 的樣品台上重新鋪上一張保鮮膜,趕去氣泡平鋪,然後把凝膠放在上麵。關(guan) 上樣品室外門,打開紫外燈(360nm 或 254nm),通過觀察孔進行觀察。
注意事項
1、電泳中使用的溴化乙錠(EB)為(wei) 中度毒性、強致癌性物質,務必小心,勿沾染於(yu) 衣物、
皮膚、眼睛、口鼻等。所有操作均隻能在專(zhuan) 門電泳區域操作,戴一次性手套,並及時更換。
2、預先加入EB 時可能使 DNA 的運動速度下降15%左右,且不同構型的 DNA 的影響程度不同。所以為(wei) 取得較真實的電泳結果可以在電泳結束後再用 0.5μg/ml 的 EB 溶液浸泡染色。EB在光照下易降解,若凝膠放置一段時間後才觀察,即使原來膠內(nei) 或樣品已加 EB,建議選擇EB溶液浸泡染色。
3、加樣進膠時不要形成氣泡,需在凝膠液未凝固之前及時**,否則,需重新製膠。
4、電泳時溴酚蘭(lan) 在瓊脂糖凝膠中的運動速度可以用於(yu) 參考電泳速度,已實際電泳條帶運動速度為(wei) 準。
常見問題分析
常見問題 | 原因 | 對策 |
DNA條帶模糊 | DNA降解 | 實驗過程避免核酸酶汙染 |
電泳緩衝(chong) 液陳舊 | 電泳緩衝(chong) 液多次使用後,離子強度降低,PH值上升,緩衝(chong) 能力減弱,從(cong) 而影響電泳效果。TBE建議使用10次就更換緩衝(chong) 液 | |
所用電泳條件不合適 | 電泳時電壓不應超過6V/CM,溫度<30℃,巨大DNA鏈電泳,溫度應<15℃,核查所用電泳緩衝(chong) 液的緩衝(chong) 能力,注意經常更換 | |
DNA上樣量過多 | 減少凝膠中DNA上樣量 | |
DNA含鹽過高 | 電泳前通過乙醇沉澱去除多餘(yu) 鹽分 | |
有蛋白汙染 | 電泳前酚抽提去除蛋白 | |
DNA變性 | 電泳前勿加熱,用TE緩衝(chong) 液稀釋DNA | |
出現片狀拖帶或塗抹帶 | PCR擴增有時出現塗抹帶或片狀帶或地毯樣帶。其原因往往PCR體(ti) 係需要優(you) 化,PCR程序需要摸索。 | 其對策有:調整PCR體(ti) 係和PCR程序,摸索出合適的條件。 |
不規則DNA帶遷移 | 電泳條件不合適 | 電泳時電壓不應超過6V/CM,溫度<30℃,巨大DNA鏈電泳,溫度應<15℃,核查所用電泳緩衝(chong) 液的緩衝(chong) 能力,注意經常更換 |
DNA變性 | 電泳前勿加熱,用TE緩衝(chong) 液稀釋DNA | |
帶弱或無DNA帶 | DNA上樣量不夠 | 增加DNA上樣量,聚丙烯酰胺凝膠電泳比瓊脂糖電泳靈敏度高,上樣量可適當降低 |
DNA降解 | 實驗過程避免核酸酶汙染 | |
DNA跑出凝膠 | 縮短電泳時間,降低電壓,增強凝膠濃度 | |
EB染色的DNA,所用光源不合適 | 應用短波長(254nm)的紫外光源 | |
DNA帶缺失 | DNA跑出凝膠 | 縮短電泳時間,降低電壓,增強凝膠濃度 |
分子大小相近的DNA帶不易分辨 | 增加電泳時間,核準正確凝膠濃度 | |
DNA變性 | 電泳前勿加熱,用20mM Nacl 緩衝(chong) 液稀釋DNA | |
DNA鏈巨大,常規凝膠電泳不合適 | 在脈衝(chong) 凝膠電泳上分析 | |
電泳時Ladder扭曲 | 配膠的緩衝(chong) 液和電泳緩衝(chong) 液不是同時配置 | 同時配置,電泳緩衝(chong) 液高出液麵1-2mm即可 |
電泳時電壓過高 | 電泳時電壓不應超過6V/CM |